喹噁啉類藥物是一類化學(xué)合成類的抗菌促生長劑,它們的基本結(jié)構(gòu)是喹噁啉-1,4-二氧化物,即喹噁啉環(huán)。主要包括喹乙醇、卡巴氧、喹喔啉、喹賽多、喹多辛、西諾喹多、德那資多(肼多司)、乙酰甲喹和喹烯酮等藥物。研究表明,喹噁啉類藥物對DNA致突變、致損傷,破壞細(xì)胞抗氧化作用系統(tǒng),可以引起細(xì)胞自由基的產(chǎn)生,導(dǎo)致細(xì)胞DNA發(fā)生氧化性損傷,還會引起細(xì)胞周期阻滯和細(xì)胞凋亡。傳統(tǒng)喹噁啉類藥物喹乙醇和卡巴氧,由于其對人體危害最大,世界各國和國際組織對這兩種獸藥制定了嚴(yán)格的殘留*規(guī)定。歐盟1998年發(fā)文禁止喹乙醇和卡巴氧在食品動物生產(chǎn)中作為促生長添加劑使用。2020年我國生效實(shí)施的GB 31650-2019《食品安全/國家標(biāo)準(zhǔn)食品中獸藥最大殘留*》中規(guī)定了豬肌肉和豬肝臟組織中喹乙醇殘留標(biāo)志物的最大殘留*。同年我國農(nóng)業(yè)農(nóng)村部公告第250號規(guī)定卡巴氧及其鹽、酯為食品動物中禁止使用的藥品。但是,這些藥物在生產(chǎn)實(shí)踐中被大量地非法使用或?yàn)E用,其殘留對消費(fèi)者健康造成了巨大的潛在威脅。喹乙醇和卡巴氧進(jìn)入動物體內(nèi)后,能夠在短時(shí)間內(nèi)代謝成十多種產(chǎn)物,研究表明,3-甲基-喹噁啉-2-羧酸(MQCA)是喹乙醇在動物體內(nèi)代謝后的主要產(chǎn)物,喹噁啉-2-羧酸(QCA)是卡巴氧在動物體內(nèi)代謝后的主要產(chǎn)物,且該產(chǎn)物在動物體內(nèi)滯留時(shí)間較長,因其含量與總殘留關(guān)系穩(wěn)定,所以將MQCA定為喹乙醇在動物體內(nèi)代謝的殘留標(biāo)示物,將QCA定為卡巴氧在動物體內(nèi)代謝的殘留標(biāo)示物。
本文闡述了如何將卡巴氧、喹乙醇及代謝物從樣品基質(zhì)中分離提取出來,并經(jīng)過凈化后,轉(zhuǎn)化成液質(zhì)聯(lián)用儀可以檢測的形式。以提取、凈化為重點(diǎn),依據(jù)國標(biāo)GB/T 20746-2006,為檢測人員和相關(guān)領(lǐng)域研究人員提供一定的參考。
檢測項(xiàng)目:卡巴氧、脫氧卡巴氧、喹噁啉-2-羧酸(QCA)、3-甲基-喹噁啉-2-羧酸(MQCA)
應(yīng)用范圍:牛、豬肝臟和肌肉
前處理儀器:固相萃取裝置;氮?dú)鉂饪s儀;液體混勻器;分析天平(感量0.1 mg和0.01 g);真空泵;均質(zhì)器;移液器(10 μL~100 μL和100 μL~1000 μL);聚丙烯離心管(50 mL具塞);pH計(jì)(測量精度±0.02 pH單位);低溫離心機(jī)(可制冷到4 ℃);玻璃離心管(15 mL)。
檢測儀器:HPLC-MS/MS+ESI源
試樣制備與保存
將牛、豬肝臟和肌肉組織樣品充分?jǐn)囁椋|(zhì),分出0.5 kg作為試樣,置于清潔樣品容器中,密封,并做上標(biāo)記。將制備好的試樣于-18 ℃以下保存。
1. 卡巴氧的前處理步驟
稱取5 g試樣(精/確至0.01 g),置于50 mL聚丙烯離心管中,加入5 g中性氧化鋁,加入25 mL乙腈+乙酸乙酯(1+1)溶液,于液體混勻器上充分混合5 min,以5000 r/min離心5 min,將上清液移取至另一干凈的50 mL離心管,加入10 mL正己烷到管中,振蕩2 min,以5000 r/min離心5 min,棄去上層正己烷,將下層清液轉(zhuǎn)移至150 mL雞心瓶中。加入25 mL乙腈+乙酸乙酯(1+1)溶液,重復(fù)提取一次,正己烷除脂后合并兩次提取液于同一雞心瓶中,加入一定量的喹噁啉-2-羧酸-d4(QCA-d4)標(biāo)準(zhǔn)溶液,使其濃度為2.0 ng/g,40 ℃水浴減壓旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)至干。準(zhǔn)確加入1.0 mL 0.1 %甲酸-甲醇(19+1)溶液溶解殘?jiān)?,過0.2 μm濾膜后,供液質(zhì)測定。
2. 脫氧卡巴氧、喹噁啉-2-羧酸、3-甲基-喹噁啉-2-羧酸的前處理步驟
稱取5 g試樣(精/確至0.01 g),置于50 mL聚丙烯離心管中,加入10 mL 0.6 %甲酸溶液,混勻后,置于(47±3)℃振蕩水浴中振搖1 h;先加入3 mL1.0 mol/L Tris溶液混勻,再加入0.3 mL 0.01 g/mL蛋白酶水溶液,充分混勻后,置于(47±3)℃振蕩水浴中酶解16 h~18 h。加入20 mL 0.3 mol/L鹽酸溶液,振蕩5 min,在10 ℃以5000 r/min離心15 min,上清液過濾。將濾液移入Oasis MAX固相萃取柱(3 mL甲醇和3 mL水活化)中,待樣液全部流出后,用30 mL 0.05 mol/L乙酸鈉-甲醇(19+1)溶液淋洗固相萃取柱,真空抽干15 min。在一支干凈的玻璃管內(nèi)加入一定量的喹噁啉-2-羧酸-d4(QCA-d4)標(biāo)準(zhǔn)溶液,使其濃度為2.0 ng/g,再用4×3 mL二氯甲烷將脫氧卡巴氧洗脫至管內(nèi),在45 ℃用氮?dú)鉂饪s儀吹干。固相萃取柱再用3×3 mL甲醇、3 mL水、3×3 mL 0.1 mol/L鹽酸溶液和2×3 mL甲醇-水(1+4)溶液分別淋洗,真空抽干15 min,然后用2 mL乙酸乙酯再淋洗固相萃取柱,棄去全部淋出液,最后用3 mL 2 %甲酸乙酸乙酯溶液洗脫喹噁啉-2-羧酸(QCA)和3-甲基-喹噁啉-2-羧酸(MQCA)到上述吹干的試管中,在45 ℃用氮?dú)鉂饪s儀吹干。準(zhǔn)確加入1.0 mL 0.1 %甲酸-甲醇(19+1)溶液溶解殘?jiān)?,過0.2 μm濾膜后,供液質(zhì)測定。
4.MAX固相萃取柱用于酸性化合物的凈化,過程是“堿上樣、酸洗脫”。淋洗后一定抽干小柱,防止水相進(jìn)入洗脫液。
5.氮?dú)鉂饪s過程中,吹至近干潮濕狀態(tài),定容后采取渦旋加超聲的方式復(fù)溶,可以提高回收率。
6.該方法化合物檢出限為0.5 μg/kg,內(nèi)標(biāo)添加量為2.0 μg/kg。
參考文獻(xiàn)
GB/T 20746-2006 牛、豬肝臟和肌肉中卡巴氧、喹乙醇及代謝物殘留量的測定 液相色譜―串聯(lián)質(zhì)譜法
圖1 卡巴氧殘留量測定的前處理流程圖
圖2 脫氧卡巴氧殘留量測定的前處理流程圖
圖3 QCA和MQCA殘留量測定的前處理流程圖
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